Оптимизация протокола гормональной обработки мышей c целью вызывания суперовуляции
https://doi.org/10.33647/2074-5982-16-3-48-53
Аннотация
Гормональная обработка мышей с использованием гонадотропина сыворотки жеребой кобылы (ГСЖК) и хорионического гонадотропина человека (ХГч) считается «золотым стандартом» в процедуре вызывания суперовуляции. Несмотря на применение одних и тех же доз, эффект от использования препаратов разных производителей может отличаться. Так, нами было показано, что применение препаратов ГСЖК Синхростим 500 («Ceva Sante Animale», Франция) и Сергон («Биовета», Чехия) позволяет получить с одной особи ~25 эмбрионов при дозировке гормона 5 МЕ, тогда как в случае Фоллимага («Мосагроген», Россия) рабочая дозировка не была найдена. Сопоставимый с Синхростимом 500 и Сергоном результат был получен в случае применения комбинированного препарата Менопур («Ферринг», Германия). Исследования влияния возраста мышей на гормональный ответ организма показали, что наиболее эффективным является использование мышей в возрасте 3–4 недели, когда при минимальной лекарственной нагрузке мы получаем достаточное количество жизнеспособных эмбрионов.
Об авторах
Е. С. Савченко
ФГБУН «Научный центр биомедицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России»
Россия
Россия
Савченко Елена Сергеевна
143442, Московская обл., Красногорский р-н, п. Светлые горы, владение 1
Н. С. Огнева
ФГБУН «Научный центр биомедицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России»
Россия
Россия
Огнева Настасья Сергеевна
143442, Московская обл., Красногорский р-н, п. Светлые горы, владение 1
С. В. Максименко
ФГБУН «Научный центр биомедицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России»
Россия
Россия
Максименко Сергей Васильевич, к.б.н.
143442, Московская обл., Красногорский р-н, п. Светлые горы, владение 1
М. М. Скрипкина
ФГБУН «Научный центр биомедицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России»
Россия
Россия
Скрипкина Мария Михайловна
143442, Московская обл., Красногорский р-н, п. Светлые горы, владение 1
Н. В. Петрова
ФГБУН «Научный центр биомедицинских технологий Федерального медико-биологического агентства России»
Россия
Россия
Петрова Наталья Владимировна
143442, Московская обл., Красногорский р-н, п. Светлые горы, владение 1
Список литературы
1. Behringer R., Gertsenstein M., Nagy K.V., Nagy A. Administration of Gonadotropins for Superovulation in Mice. Cold Spring Harb. Protoc. 2018;2018(1):24–27. DOI: 10.1101/pdb.prot092403.
2. Chen X., Huang Y., Huang H., et al. Effects of superovulation, in vitro fertilization, and oocyte in vitro maturation on imprinted gene Grb10 in mouse blastocysts. Arch. Gynecol. Obstet. 2018;298(6):1219–1227. DOI: 10.1007/s00404-018-4905-3.
3. Fabian D., Babeľová J., Čikoš Š., Šefčíková Z. Overweight negatively affects outcome of superovulation treatment in female mice. Zygote. 2017;25(6):751–759. DOI: 10.1017/S0967199417000648.
4. Hasegawa A., Mochida K., Inoue H., et al. HighYield Superovulation in Adult Mice by Anti-Inhibin Serum Treatment Combined with Estrous Cycle Synchronization. Biol. Reprod. 2016;94(1):21. DOI: 10.1095/biolreprod.115.134023.
5. Hoogenkamp H., Lewing P. Superovulation in mice in relation to their age. Vet. Q. 1982;4(1):47–48. DOI: 10.1080/01652176.1982.9693838.
6. Huffman S.R., Pak Y., Rivera R.M. Superovulation induces alterations in the epigenome of zygotes, and results in differences in gene expression at the blastocyst stage in mice. Mol. Reprod. Dev. 2015;82(3):207–217. DOI: 10.1002/mrd.22463.
7. Kolbe T., Sheety S., Walter I., Palme R., Rülicke T. Impact of superovulation and mating on the wellbeing of juvenile and adult C57BL/6N mice. Reprod. Fertil. Dev. 2016;28(7):969–973. DOI: 10.1071/RD14372.
8. Stouder C., Deutsch S., Paoloni-Giacobino A. Superovulation in mice alters the methylation pattern of imprinted genes in the sperm of the offspring. Reprod. Toxicol. 2009;28(4):536–541. DOI: 10.1016/j.reprotox.2009.06.009.
9. Taiyeb A.M., Muhsen-Alanssari S.A., Dees W.L., et al. Improvements in oocyte competence in superovulated mice following treatment with cilostazol: Ovulation of immature oocytes with high developmental rates. Biochem. Pharmacol. 2017;137:81–92. DOI: 10.1016/j.bcp.2017.04.019.
10. Takeo T., Nakagata N. Superovulation using the combined administration of inhibin antiserum and equine chorionic gonadotropin increases the number of ovulated oocytes in C57BL/6 female mice. PLoS One. 2015;10(5):e0128330. DOI: 10.1371/journal.pone.0128330.
11. Uysal F., Ozturk S., Akkoyunlu G. Superovulation alters DNA methyltransferase protein expression in mouse oocytes and early embryos. J. Assist. Reprod. Genet. 2018;35(3):503–513. DOI: 10.1007/s10815017-1087-z.
12. Yu B., Smith T.H., Battle S.L., Ferrell S., Hawkins R.D. Superovulation alters global DNA methylation in early mouse embryo development. Epigenetics. 2019;14(8):780–790. DOI: 10.1080/15592294.2019.1615353.
13. Zudova D., Wyrobek A.J., Bishop J., Marchetti F. Impaired fertility in T-stock female mice after superovulation. Reproduction. 2004;128(5):573–581. DOI: 10.1530/rep.1.00333.
Рецензия
Для цитирования:
Савченко Е.С., Огнева Н.С., Максименко С.В., Скрипкина М.М., Петрова Н.В. Оптимизация протокола гормональной обработки мышей c целью вызывания суперовуляции. БИОМЕДИЦИНА. 2020;16(3):48-53. https://doi.org/10.33647/2074-5982-16-3-48-53
For citation:
Savchenko E.S., Ogneva N.S., Maksimenko S.V., Skripkina M.M., Petrova N.V. Optimizing the Hormonal Mice Treatment Protocol to Induce Superovulation. Journal Biomed. 2020;16(3):48-53. (In Russ.) https://doi.org/10.33647/2074-5982-16-3-48-53
Просмотров:
508
Послать статью по эл. почте 
