КРИОСОХРАНЕНИЕ СРЕЗОВ МОЗГА КРЫС С РАЗЛИЧНОЙ ДЛИТЕЛЬНОСТЬЮ И ВОССТАНОВЛЕНИЕ ИХ ЭЛЕКТРИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ
Аннотация
Исследовали влияние криосохранения переживающих срезов мозга крыс-самцов популяции линий Wistar с различной длительностью (4, 8, 10, 23 и 90 сут) на изменения электрической активности. Измерялись амплитуды АМПA- и НМДА-зависимых глутаматергических ионотропных механизмов, а также потенциала действия латерального обонятельного тракта (ПД ЛОТ) при температуре –20°С и последующем отогревании до +37°С. После криоконсервации эти механизмы сохранялись и восстанавливались. Использовалась методика электрофизиологической регистрации АМПА-, НМДА-потенциалов и суммарного ПД ЛОТ. После криосохранения АМПА-зависимые механизмы и активность проводящих волокон ЛОТ восстанавливались до нормотермических значений. Напротив, восстановление НМДА-зависимых механизмов было неполным и составляло в среднем 34% по сравнению с нормотермическими значениями. Результаты свидетельствуют, что после криоконсервации срезов мозга крыс активности базовых ионотропных глутаматергических механизмов восстанавливаются.
Ключевые слова
Об авторе
А. А. Мокрушин
ФГБУН «Институт физиологии им. И.П. Павлова» РАН
Россия
Россия
д.б.н.,
199034, Санкт-Петербург, наб. Макарова, д. 6
Список литературы
1. Ивличева Н.А., Чистопольский И.А., Крамарова Л.И. Электрофизиологическая активность мозга моллюска lymnaea stagnalis после криоконсервации в жидком азоте (–196°С). Биологические мембраны. 2014;31(5):342–351.
2. Митюшов М.И., Емельянов Н.А., Мокрушин А.А. Переживающий срез мозга как объект нейрофизиологического и нейрохимического исследования. Л.: Наука, 1986. 127 c.
3. Мокрушин А.А., Боровиков С.Е. Установка для изучения гипотермических эффектов на переживающих срезах мозга теплокровных. Международный журнал прикладных фундаментальных исследований. 2017;2(2):214–217.
4. Пичугин Ю.И. Теоретические и практические аспекты современной криобиологии. М.: Медицина, 2013. C. 60–62.
5. Bakhach J. The cryopreservation of composite tissues: Principles and recent advancement on cryopreservation of different type of tissues. Organogenesis. 2009;5:119–126.
6. Cho S., Wood A., Bowlby M.R. Brain slices as models for neurodegenerative disease and screening platforms to identify novel therapeutics. Curr. Neuropharmacol. 2007;5:19–33.
7. Fang F., Zhang Z.-X. Cryopreservation of embryonic cerebral tissue of rat. Cryobiology. 1992;29:267–273.
8. Mokrushin A.A., Pavlinova L.I. Hsp70 promotes synaptic transmission in brain slices damaged by contact with blood clot. Eur. J. Pharmacol. 2011;674:20–28.
9. Mokrushin A.A., Pavlinova L.I., Borovikov S.E. Infl uence of cooling rate on activity of ionotropic glutamate receptors in brain slices at hypothermia. J. Therm. Biol. 2014;44:5–13.
10. Mokrushin A.A. Effects cryopreservation of ionotropic glutamatergic receptor mechanisms in vitro. CryoLetters. 2015;36(6):367–377.
11. Mokrushin A., Pavlinova L. Neurotropic and Protective Effects of L-carnosine: Studies in vitro. In: Carnosine: Physiological Effects and Research Insights. Ed. by D. Wells. New York: Nova Science Publishers, 2016. P. 113–158.
12. Paynter S.J. Principles and practical issues for cryopreservation of nerve cells. Brain Res. Bull. 2008;75:1–14.
13. Rebola N., Srikmuar B.N., Mulle C. Activity-Dependent Synaptic Plasticity of NMDA Recepotors. J. Physiol. 2010;588:93–99.
Для цитирования:
Мокрушин А.А. КРИОСОХРАНЕНИЕ СРЕЗОВ МОЗГА КРЫС С РАЗЛИЧНОЙ ДЛИТЕЛЬНОСТЬЮ И ВОССТАНОВЛЕНИЕ ИХ ЭЛЕКТРИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ. БИОМЕДИЦИНА. 2019;(4):98-106. https://doi.org/10.33647/2074-5982-15-4-98-106
For citation:
Mokrushin A.A. CRYOPRESERVATION OF RAT BRAIN SLICES WITH DIFFERENT DURATION AND RESTORATION OF THEIR ELECTRICAL ACTIVITY. Journal Biomed. 2019;(4):98-106. (In Russ.) https://doi.org/10.33647/2074-5982-15-4-98-106
Просмотров: 98
Послать статью по эл. почте 