Влияние альгината кальция на Th1 и Th2 иммунный ответ
Abstract
В присутствии альгината кальция ЛПС-индуцированная выработка макрофагами мыши IL-12 не
изменялась, а IL-10 подавлялась; увеличивалась продукция оксида азота нестимулированных клеток,
при этом активность аргиназы не менялась. Курсовое введение альгината кальция приводило к стиму-
ляции Th1 иммунных реакций.
Data of the experimental study of effect calcium alginate with a molecular weight 403 kDa on murine
macrophages and Th1/Th2 immune responses has been shown here. It had been demonstrated that calcium
alginate affects no on IL-12 production by murine macrophages and its arginase activity, but suppresses of
IL-10 and stimulates of NO production by ones. Injections of calcium alginate in animals resulted in activation
of Th1 response, induced by sheep red blood cells, but decrease of weight of Th2 anaphylaxis induced by
ovalbumine.
изменялась, а IL-10 подавлялась; увеличивалась продукция оксида азота нестимулированных клеток,
при этом активность аргиназы не менялась. Курсовое введение альгината кальция приводило к стиму-
ляции Th1 иммунных реакций.
Data of the experimental study of effect calcium alginate with a molecular weight 403 kDa on murine
macrophages and Th1/Th2 immune responses has been shown here. It had been demonstrated that calcium
alginate affects no on IL-12 production by murine macrophages and its arginase activity, but suppresses of
IL-10 and stimulates of NO production by ones. Injections of calcium alginate in animals resulted in activation
of Th1 response, induced by sheep red blood cells, but decrease of weight of Th2 anaphylaxis induced by
ovalbumine.
About the Authors
М. Данилец
Научно-исследовательский институт фармакологии СО РАМН, Томск
Russian Federation
Russian Federation
Ю. Бельский
Научно-исследовательский институт фармакологии СО РАМН, Томск
Russian Federation
Russian Federation
Н. Бельская
Научно-исследовательский институт фармакологии СО РАМН, Томск
Russian Federation
Russian Federation
Е. Трофимова
Научно-исследовательский институт фармакологии СО РАМН, Томск
Russian Federation
Russian Federation
Е. Учасова
Научно-исследовательский институт фармакологии СО РАМН, Томск
Russian Federation
Russian Federation
А. Лигачева
Научно-исследовательский институт фармакологии СО РАМН, Томск
Russian Federation
Russian Federation
А. Иванова
Научно-исследовательский институт фармакологии СО РАМН, Томск
Russian Federation
Russian Federation
В. Ковалев
Институт биологии моря им. А.В. Жирмунского Дальневосточного отделения РАН,
Владивосток
Russian Federation
Russian Federation
Ю. Хотимченко
Институт биологии моря им. А.В. Жирмунского Дальневосточного отделения РАН,
Владивосток
Russian Federation
Russian Federation
References
1. Бельская Н.В., Бельский Ю.П.,Данилец М.Г., Трофимова Е.С., Патру- шев В.К., Шерстобоев Е.Ю., Агафонов В.И. Иммуносупрессорная актив- ность костномозговых клеток мышей при Th1-зависимом типе иммунного от- вета. // Иммунология. Т. 26. 2005. № 5. С. 292-295.
2. Бельская Н.В., Данилец М.Г., Бельский Ю.П., Трофимова Е.С., Уча- сова Е.Г., Борсук О.С., Агафонов В.И. Моделирование системной анафилаксии на мышах линии BALb/c. // Биомедици- на. 2010. № 1. С. 37-50.
3. Савченко О.В., Кропотов А.В., Хотимченко Ю.С. Защитное действие альгината кальция при свинцовой ин- токсикации лабораторных животных. // Биол. Моря Т. 20. 1994. № 2. С. 163-167.
4. Савченко О.В., Хотимченко Ю.С. Энтеросорбция свинца детоксалом у де- тей. // Педиатрия. 2002. № 1. С. 76-80.
5. Хаитов Р.М., Гущин И.С., Пине- гин Б.В., Зебрев А.И. Эксперименталь- ное изучение иммунотропной актив- ности фармакологических препаратов (методические рекомендации). // Ведо- мости Фармакологического Комитета. 1999. № 1. С. 31-36.
6. Barnes P.J., Karin M. Nuclear factor-kB a pivotal transcription factor in chronic inflammatory diseases. // N. Engl.J. Medicine. 1997. Vol. 336. № 15. Р. 1066- 1071.
7. Blumenkrantz S., Asboe-Haunsen G. New method for quantitative determination of uronic acids. // Anal. Biochem. 1973. Vol. 54. Р. 484-489.
8. Flo T.H., Ryan L., Latz E., TakeuchiO., Monks B.G., Lien E., Halaas Q.,Akira S., Skjak-Bræk G., Golenbock D.T., Espevik T. Involvement of Toll- like Receptor (TLR) 2 and TLR4 in Cell Activation by Mannuronic Acid Polymers.// J. Biological Chemistry. 2002. Vol. 277. № 38. Р. 35489-35495.
9. Fujihara M., Komiyama K.,Umezawa I., Nagumo T. Antitumor acti- vity and action-machanisms of sodium alginate isolated from the brown seaweed Sargassum fulvellum. // Chemotherapy (Tokyo). 1984. Vol. 32. Р. 1004-1009.
10. Gehlhar K., Schlaak M., Becker W-M., Bufe A. Monitoring allergen immunotherapy of pollen-allergic patients: the ratio of allergen-specific IgG4 to IgG1 correlates with clinical outcome. // Clinical & Experimental Allergy. 1999. Vol. 29. № 4. Р. 497-506.
11. Hsieh C.S., Macatonia S.E., O Garra A., Murphy R.M. T cell genetic background determines default T helper phenotype development in vitro. // J. Exp. Med. 1995. Vol. 181. Р. 713-721.
12. Iwamoto M., Kurachi M., Nakashima T., Kim D., Yamaguchi K., Oda T., Iwamoto Y. Structure - activity relationship of alginate oligosaccharidesin the induction of cytokine production from RAW264.7 cells. // FEBS Letters. 2005. Vol. 576. № 2. Р. 4423-4429.
13. Khotimchenko Y.S., Khotimchenko M.Y. Healing and preventive effects of calcium alginate on carbon tetrachloride induced liver injury in rats. // Marine Drugs. 2004. Vol. 2. Р. 108-122.
14. Kravtchenko T.P., Pilnik A.A. Simplified method for the determination of the intrinsic viscosity of pectin solutions by classical viscosimetry. // IRL Press, Oxford. 1990. Р. 281-285.
15. Kurachi M., Nakashima T., Miya- jima C., Iwamoto Y., Muramatsu T., Yamaguchi K., Oda T. Comparison of the activities of various alginates to induce TNF-α secretion in RAW264.7 cells. // J. Infection and Chemotherapy. 2005. Vol. 11. № 4. Р. 199-203.
16. Laitinen T. Molecular genetics provides novel insights to the treatment of asthma. // Duodecim. 2004. Vol. 120. № 20. Р. 2373-2374.
17. Mantovani A. Macrophage diversi- ty and polarization: in vivo veritas. // Blood. 2006. Vol. 108. № 2. Р. 408-409.
18. Mosser D.M. The many faces of macrophage activation. // J. of Leukocyte Biology. 2003. Vol. 73. Р. 209-212.
19. Munder M., Eichmann K., Modolell M. Alternative metabolic states in murine macrophages reflected by the nitric oxide synthase/arginase balance: competitive regulation by CD4+ T cells correlates with Th1/Th2 phenotype .// J. Immunol. 1998. Vol. 160. № 11. Р. 5347- 5354.
20. Netea M.G., Van der Meer J.W.M., Sutmuller R.P., Adema G.J., Kullberg B.-J. From the Th1/Th2 paradigm towards a Tolllike receptor/Thelper bias. // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2005. Vol. 49. № 10. Р. 3991-3996.
21. Otterlei M., Ostgaard K., Skjak-Braek G. Induction of cytokine production from human monocytes stimulated with alginate. // J. Immunother. 1991. Vol. 10. Р. 286-291.
22. Paul W.E. Th1 fate determination in CD4+ T cells: notice is served of the importance of IL-12! // J. Immunol. 2008. Vol. 181. Р. 4435-4436.
23. Son E.H., Moon E.Y., Rhee D.K., Pyo S. Stimulation of various functions in murine peritoneal macrophages by high mannuronic acid-containing alginate (HMA) exposure in vivo. // Int. Immunopharmacol. 2001. Vol. 1. Р. 147-154.
24. Yang D., Jones K.S. Effect of alginate on innate immune activation of macrophages. // J. Biomed Mater Res. 2009. Vol. 90. № 2 Р. 411-419.
25. Yokozeki B.H., Ghoreishi M., Taka- gawa S., Takayama K., Satoh T., Katayama I., Takeda K., Akira S., NishiokaK. Signal transducer and activator of transcription 6 is essential in the induction of contact hypersensitivity. // J. Exp. Med. 2000. Vol. 191. № 6. Р. 995-1004.
Review
For citations:
, , , , , , , , . Journal Biomed. 2011;1(3):125-132. (In Russ.)
Views:
232
Email this article 
