Экзогенные РНК как потенциальные фармакологические агенты
https://doi.org/10.33647/2074-5982-18-3-118-121
Аннотация
Экзогенные РНК видонеспецифически изменяют передачу сигналов в тканях, регулируя экспрессию генов, что приводит к фенотипическим изменениям в клетках, а их применение может стать основой для новой тактики регуляторной профилактики и терапии различных заболеваний. Технологии экзогенных РНК являются перспективным подходом к созданию принципиально нового класса лекарственных препаратов или биологически активных добавок (для растительных экзогенных РНК) с широким спектром фармакологической активности и минимальным количеством побочных эффектов.
Об авторах
С. В. Оковитый
ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный химико-фармацевтический университет» Минздрава России
Россия
Россия
Оковитый Сергей Владимирович - доктор медицинских наук, профессор.
197376, Санкт-Петербург, ул. Профессора Попова, 14, лит. А.
Е. Б. Шустов
ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный химико-фармацевтический университет» Минздрава России
Россия
Россия
Шустов Евгений Борисович - доктор медицинских наук, профессор.
197376, Санкт-Петербург, ул. Профессора Попова, 14, лит. А.
Список литературы
1. Белоус А.М., Годин В.П., Панков Е.Я. Экзогенные нуклеиновые кислоты и восстановительные процессы. М.: Медицина; 1974.
2. Оковитый С.В. Протеинсинтетические и иммунные механизмы защитно-репаративных эффектов гепатотропных средств. Автореф. дисс. ... канд. мед. наук. СПб.; 1995.
3. An D., Schneller J.L., Frassetto A., Liang S., Zhu X., Park J.S., Theisen M., Hong S.J., Zhou J., Rajendran R., Levy B., Howell R., Besin G., Presnyak V., Sabnis S., Murphy-Benenato K.E., Kumarasinghe E.S., Salerno T., Mihai C., Lukacs C.M., Chandler R.J., Guey L.T., Venditti C.P., Martini P.G.V. Systemic messenger RNA therapy as a treatment for methylmalonic acidemia. Cell Rep. 2017;21(12):3548-3558. DOI: 10.1016/j.celrep.2017.11.081.
4. Hou D., He F., Ma L., Cao M., Zhou Z., Wei Z., Xue Y., Sang X., Chong H., Tian C., Zheng S., Li J., Zen K., Chen X., Hong Z., Zhang C.Y., Jiang X. The potential atheroprotective role of plant MIR156a as a repressor of monocyte recruitment on inflamed human endothelial cells. J. Nutr. Biochem. 2018;57:1197-205. DOI: 10.1016/j.jnutbio.2018.03.026.
5. Ji L., Chen X. Regulation of small RNA stability: Methylation and beyond. Cell Res. 2012;22(4):624-636. DOI: 10.1038/cr.2012.36.
6. Jiang L., Berraondo P., Jerico D., Guey L.T., Sampedro A., Frassetto A., Benenato K.E., Burke K., Santamaria E., Alegre M., Pejenaute A., Kalariya M., Butcher W., Park J.S., Zhu X., Sabnis S., Kumarasinghe E.S., Salerno T., Kenney M., Lukacs C.M., Avila M.A., Martini P.G.V., Fontanellas A. Systemic messenger RNA as an etiological treatment for acute intermittent porphyria. Nat. Med. 2018;24(12):1899-1909. DOI: 10.1038/s41591-018-0199-z.
7. Li J., Zhang Y., Li D., Liu Y., Chu D., Jiang X., Hou D., Zen K., Zhang C.Y. Small non-coding RNAs transfer through mammalian placenta and directly regulate fetal gene expression. Protein Cell. 2015;6(6):391-396. DOI: 10.1007/s13238-015-0156-2.
8. Li Z., Xu R., Li N. MicroRNAs from plants to animals, do they define a new messenger for communication? Nutr. Metab. (Lond). 2018;15:68. DOI: 10.1186/s12986-018-0305-8.
9. Liang H., Huang L., Cao J., Zen K., Chen X., Zhang C.Y. Regulation of mammalian gene expression by exogenous microRNAs. Wiley Interdiscip. Rev. RNA. 2012;3(5):733-742. DOI: 10.1002/wrna.1127.
10. Liang H., Zen K., Zhang J., Zhang C.Y., Chen X. New roles for microRNAs in cross-species communication. RNA Biol. 2013;10(3):367-370. DOI: 10.4161/rna.23663.
11. Lukasik A., Brzozowska I., Zielenkiewicz U., Zielen-kiewicz P. Detection of plant miRNAs abundance in human breast milk. Int. J. Mol. Sci. 2017;19(1):37. DOI: 10.3390/ijms19010037.
12. Malone R.W., Felgner P.L., Verma I.M. Cationic liposome-mediated RNA transfection. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1989;86(16):6077-6081. DOI: 10.1073/pnas.86.16.6077.
13. Martini P.G.V, Guey L.T. A new era for rare genetic diseases: messenger RNA therapy. Hum. Gene Ther. 2019;30(10):1180-1189. DOI: 10.1089/hum.2019.090.
14. Patel S., Ashwanikumar N., Robinson E., DuRoss A., Sun C., Murphy-Benenato K.E., Mihai C., Almarsson О., Sahay G. Boosting intracellular delivery of lipid nanoparticle-encapsulated mRNA. Nano Lett. 2017;17(9):5711-5718. DOI: 10.1021/acs.nano-lett.7b02664.
15. Sabnis S., Kumarasinghe E.S., Salerno T., Mihai C., Ketova T., Senn J.J., Lynn A., Bulychev A., McFadyen I., Chan J., Almarsson О., Stanton M.G., Benenato K.E. A novel amino lipid series for mRNA delivery: improved endosomal escape and sustained pharmacology and safety in non-human primates. Mol. Ther. 2018;26(6):1509-1519. DOI: 10.1016/j.ymthe.2018.03.010.
16. Saquib M., Agnihotri P., Mon U., Biswas S. Exogenous miRNA: A perspective role as therapeutic in rheumatoid arthritis. Curr. Rheumatol. Rep. 2021;23(6):43. DOI: 10.1007/s11926-021-01009-7.
17. Schlake T., Thess A., Thran M., Jordan I. mRNA as novel technology for passive immunotherapy. Cell Mol. Life Sci. 2019;76(2):301-328. DOI: 10.1007/s00018-018-2935-4.
18. Smirnov A.V. Potential use of exogenous RNAs for the analysis of the complex effects of biologically active substances. Bull. Eksp. Biol. and Med. 1985;100(7):81-83.
19. Wolff J.A., Malone R.W., Williams P., Chong W., Acsadi G., Jani A., Felgner P.L. Direct gene transfer into mouse muscle in vivo. Science. 1990;247(4949 Pt 1):1465-1468. DOI: 10.1126/science.1690918.
20. Zhu X., Yin L., Theisen M., Zhuo J., Siddiqui S., Levy B., Presnyak V., Frassetto A., Milton J., Salerno T., Benenato K.E., Milano J., Lynn A., Sabnis S., Burke K., Besin G., Lukacs C.M., Guey L.T., Finn P.F., Martini P.G.V. Systemic mRNA therapy for the treatment of Fabry disease: Preclinical studies in wild-type mice, Fabry mouse model, and wild-type non-human primates. Am. J. Hum. Genet. 2019;104(4):625-637. DOI: 10.1016/j.ajhg.2019.02.003.
21. Wang W., Liu D., Zhang X., Chen D., Cheng Y., Shen F. Plant microRNAs in cross-kingdom regulation of gene expression. Int. J. Mol. Sci. 2018;19(7):2007. DOI: 10.3390/ijms19072007.
22. Zhang L., Hou D., Chen X., Li D., Zhu L., Zhang Y., Li J., Bian Z., Liang X., Cai X., Yin Y., Wang C., Zhang T., Zhu D., Zhang D., Xu J., Chen Q., Ba Y., Liu J., Wang Q., Chen J., Wang J., Wang M., Zhang Q., Zhang J., Zen K., Zhang CY. Exogenous plant MIR168a specifically targets mammalian LDLRAP1: Evidence of cross-kingdom regulation by microR-NA. Cell Res. 2012;22(1):107-126. DOI: 10.1038/cr.2011.158.
23. Zhou Z., Li X., Liu J., Dong L., Chen Q., Liu J., Kong H., Zhang Q., Qi X., Hou D., Zhang L., Zhang G., Liu Y., Zhang Y., Li J., Wang J., Chen X., Wang H., Zhang J., Chen H., Zen K., Zhang CY. Honeysuckle-encoded atypical microRNA2911 directly targets influenza A viruses. Cell Res. 2015;25(1):39-49. DOI: 10.1038/cr.2014.130.
Рецензия
Для цитирования:
Оковитый С.В., Шустов Е.Б. Экзогенные РНК как потенциальные фармакологические агенты. БИОМЕДИЦИНА. 2022;18(3):118-121. https://doi.org/10.33647/2074-5982-18-3-118-121
For citation:
Okovitiy S.V., Shustov E.B. Exogenous RNAs as Potential Pharmacological Agents. Journal Biomed. 2022;18(3):118-121. (In Russ.) https://doi.org/10.33647/2074-5982-18-3-118-121
Просмотров:
311
Послать статью по эл. почте 
