Клеточный состав надпочечников крыс-самцов при введении уретана
https://doi.org/10.33647/2074-5982-21-2-71-80
Аннотация
Надпочечники представляют собой эндокринный орган, участвующий в регуляции практически всех жизненно важных процессов в организме. Работа основных структурных элементов надпочечников — кортикоцитов и хромаффинных клеток — во многом зависит от клеточного микроокружения. Известно, что в структуру паренхимы надпочечников входят лимфоциты, макрофаги, мастоциты и другие клетки. Уретан является одним из химических стрессоров, который способен влиять на структуру надпочечников. В данной статье представлено изучение изменений клеточного состава надпочечников при действии уретана. Выявлено, что однократное внутрибрюшинное введение уретана крысам-самцам приводит к изменениям в структуре надпочечников в виде уменьшения числа пролиферирующих клеток и мастоцитов, увеличения числа фибробластов и макрофагов и инфильтрации органа лимфоцитами, преимущественно NK-клетками.
Об авторах
Н. Ю. Тимофеева
ФГБОУ ВО «Чувашский государственный университет имени И.Н. Ульянова»
Россия
Россия
Тимофеева Наталья Юрьевна
428015, Чувашская Республика, Чебоксары, Московский пр-т, 15
Г. Ю. Стручко
ФГБОУ ВО «Чувашский государственный университет имени И.Н. Ульянова»
Россия
Россия
Стручко Глеб Юрьевич, д.м.н., проф.
428015, Чувашская Республика, Чебоксары, Московский пр-т, 15
Л. М. Меркулова
ФГБОУ ВО «Чувашский государственный университет имени И.Н. Ульянова»
Россия
Россия
Меркулова Лариса Михайловна, д.м.н., проф.
428015, Чувашская Республика, Чебоксары, Московский пр-т, 15
О. Ю. Кострова
ФГБОУ ВО «Чувашский государственный университет имени И.Н. Ульянова»
Россия
Россия
Кострова Ольга Юрьевна, к.м.н., доц.
428015, Чувашская Республика, Чебоксары, Московский пр-т, 15
И. С. Стоменская
ФГБОУ ВО «Чувашский государственный университет имени И.Н. Ульянова»
Россия
Россия
Стоменская Ирина Станиславовна, к.м.н., доц.
428015, Чувашская Республика, Чебоксары, Московский пр-т, 15
Е. В. Москвичев
ФГБОУ ВО «Чувашский государственный университет имени И.Н. Ульянова»
Россия
Россия
Москвичев Евгений Васильевич, д.м.н.
428015, Чувашская Республика, Чебоксары, Московский пр-т, 15
Список литературы
1. Арташян О.С. Влияние острой гипоксии на систему тучных клеток крыс. Мат-лы XI Всеросс. науч.- практ. конф. «Молодые ученые в медицине». Казань, 2006:207–208.
2. Белик И.А., Удочкина Л.А., Федченко С.Н., Ладыш И.А. Гистоморфометрическое исследование структуры надпочечных желез интактных половозрелых крыс. Морфологический альманах имени В.Г. Ковешникова. 2023;21(1):17–19.
3. Москвичев Е.В., Меркулова Л.М., Стручко Г.Ю. Возрастная и акцидентальная инволюция тимуса. Чебоксары: Изд-во Чуваш. Ун-та, 2015:170.
4. Нехаева Т.Л., Чернов А.Н., Торопова Я.Г., Галагудза М.М., Балдуева И.А. Разнообразие опухолевых моделей для тестирования противоопухолевой активности веществ у мышей. Вопросы онкологии. 2020;66(4):353–363. DOI: 10.37469/0507-3758-2020-66-4-353-363.
5. Полина Ю.В., Наумова Л.И., Шишкина Т.А., Родзаевская Е.Б. Морфофункциональные изменения в надпочечниках крыс в условиях экспериментальной модели иммобилизационного стресса. Forcipe. 2020;3(S2):32–35.
6. Almeida H., Ferreira J., Neves D. Macrophages of the adrenal cortex: a morphological study of the effects of aging and dexamethasone administration. Ann. N.Y. Acad Sci. 2004;1019:135–140. DOI: 10.1196/annals.1297.024.
7. Berthon A., Sahut-Barnola I., Lambert-Langlais S., de Joussineau C., Damon-Soubeyrand C., Louiset E., Taketo M.M., Tissier F., Bertherat J., Lefrançois-Martinez A.M., Martinez A., Val P. Constitutive betacatenin activation induces adrenal hyperplasia and promotes adrenal cancer development. Hum. Mol. Genet. 2010;19(8):1561–1576. DOI: 10.1093/hmg/ddq029.
8. Betterle C., Morlin L. Autoimmune Addison's disease. Endocrine Development. 2011;20:161–172. DOI: 10.1159/000321239.
9. Duparc C., Moreau L., Dzib J.F., Boyer H.G., Tetsi Nomigni M., Boutelet I., Boulkroun S., Mukai K., Benecke A.G., Amar L., Gobet F., Meatchi T., Plouin P.F., Zennaro M.C., Louiset E., Lefebvre H. Mast cell hyperplasia is associated with aldosterone hypersecretion in a subset of aldosterone-producing adenomas. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2015;100(4):E550–560. DOI: 10.1210/jc.2014-3660.
10. Fudulu D.P., Horn G., Hazell G., Lefrançois-Martinez A.M., Martinez A., Angelini G.D., Lightman S.L., Spiga F. Co-culture of monocytes and zona fasciculata adrenal cells: An in vitro model to study the immune-adrenal cross-talk. Mol. Cell Endocrinol. 2021;526:111– 195. DOI: 10.1016/j.mce.2021.111195.
11. Hayashi Y., Hiyoshi T., Takemura T., Kurashima C., Hirokawa K. Focal lymphocytic infiltration in the adrenal cortex of the elderly: immunohistochemical analysis of infiltrating lymphocytes. Clinical and Experimenal Immunology. 1989;77(1):101–105.
12. Hellesen A., Bratland E., Husebye E.S. Autoimmune addison’s disease — an update on pathogenesis. Ann Endocrinol (Paris). 2018;79:157–163. DOI: 10.1016/j.ando.2018.03.008.
13. Ishii T., Mitsui T., Suzuki S., Matsuzaki Y., Hasegawa T. A genome-wide expression profile of adrenocortical cells in knockout mice lacking steroidogenic acute regulatory protein. Endocrinology. 2012;153(6):2714–2723. DOI: 10.1210/en.2011-1627.
14. Kanczkowski W., Sue M., Bornstein S.R. Adrenal gland microenvironment and its involvement in the regulation of stress-induced hormone secretion during sepsis. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2016;7:156. DOI: 10.3389/fendo.2016.00156.
15. Kanczkowski W., Sue M., Bornstein S.R. The adrenal gland microenvironment in health, disease and during regeneration. Hormones (Athens). 2017;16(3):251–265. DOI: 10.14310/horm.2002.1744.
16. Kaneko J., Harvey J., Bruss M. Clinical biochemistry of domestic animals. 6th ed. Academic Press, 2008:928.
17. Kemp C.J. Animal models of chemical carcinogenesis: driving breakthroughs in cancer research for 100 years. Cold Spring Harb. Protoc. 2015;2015(10):865–874.
18. Kitawaki Y., Nakamura Y., Kubota-Nakayama F., Yamazaki Y., Miki Y., Hata S., Ise K., Kikuchi K., Morimoto R., Satoh F., Sasano H. Tumor microenvironment in functional adrenocortical adenomas: immune cell infiltration in cortisol-producing adrenocortical adenoma. Hum. Pathol. 2018;77:88–97. DOI: 10.1016/j.humpath.2018.03.016.
19. Krywanczyk A., Bundock E.A. Fatal rotavirus infection in a 4-year-old with unsuspected autoimmune adrenal insufficiency. Acad. Forensic Pathol. 2017;7:130–135. DOI: 10.23907/2017.015.
20. Lerario A.M., Finco I., LaPensee C., Hammer G.D. Molecular mechanisms of stem/progenitor cell maintenance in the adrenal cortex. Front. Endocrinol. (Lausanne). 2017;8:52. DOI: 10.3389/fendo.2017.00052.
21. Lopez A.G., Duparc C., Wils J., Naccache A., Castanet M., Lefebvre H., Louiset E. Steroidogenic cell microenvironment and adrenal function in physiological and pathophysiological conditions. Mol. Cell Endocrinol. 2021;535:111377. DOI: 10.1016/j.mce.2021.111377.
22. Marx C., Bornstein S.R., Wolkersdörfer G.W. Cellular immune-endocrine interaction in adrenocortical tissues. Eur. J. Clin. Invest. 2000;30(Suppl. 3):1–5.
23. Naccache A., Louiset E., Duparc C., Laquerrière A., Patrier S., Renouf S., Gomez-Sanchez C.E., Mukai K., Lefebvre H., Castanet M. Temporal and spatial distribution of mast cells and steroidogenic enzymes in the human fetal adrenal. Mol. Cell. Endocrinol. 2016;434:69– 80. DOI: 10.1016/j.mce.2016.06.015.
24. Paepegaey A.-C., Lheure C., Ratour C., Lethielleux G., Clerc J., Bertherat J., Kramkimel N., Groussin L. Polyendocrinopathy resulting from pembrolizumab in a patient with a malignant melanoma. J. Endocr. Soc. 2017;1(6):646–649. DOI: 10.1210/js.2017-00170.
25. Pignatti E., Leng S., Carlone D.L., Breault D.T. Regulation of zonation and homeostasis in the adrenal cortex. Mol. Cell Endocrinol. 2017;441:146–155. DOI: 10.1016/j.mce.2016.09.003.
26. Qian B.-Z., Pollard J.W. Macrophage diversity enhances tumor progression and metastasis. Cell. 2010;141(1):39–51. DOI: 10.1016/j.cell.2010.03.014.
27. Redente E.F., Orlicky D.J., Bouchard R.J., Malkinson A.M. Tumor signaling to the bone marrow changes the phenotype of monocytes and pulmonary macrophages during urethane-induced primary lung tumorigenesis in A/J mice. Am. J. Pathol. 2007;170(2):693– 708. DOI: 10.2353/ajpath.2007.060566.
28. Roberts E., Dobromylskyj M.J. Histopathological evaluation of the adrenal glands in a cat with primary hypoadrenocorticism and multiple endocrine disease. JFMS Open Rep. 2022;8(2):20551169221125207. DOI: 10.1177/20551169221125207.
29. Rose N., Mackay I. Autoimmune diseases. 5th ed. Academic Press. 2014:1304.
30. Theoharides T.C., Twahir A., Kempuraj D. Mast cells in the autonomic nervous system and potential role in disorders with dysautonomia and neuroinflammation. Ann. Allergy Asthma Immunol. 2023;9:1081- 1206(23)01397-2. DOI: 10.1016/j.anai.2023.10.032.
31. Trainer H., Hulse P., Higham C.E., Trainer P., Lorigan P. Hyponatraemia secondary to nivolumab-induced primary adrenal failure. Endocrinol. Diabetes Metab. Case Rep. 2016;2016:16-0108. DOI: 10.1530/EDM-16-0108.
32. Tyczewska M., Sujka-Kordowska P., Szyszka M., Jopek K., Blatkiewicz M., Malendowicz L.K., Rucinski M. Transcriptome profile of the rat adrenal gland: parenchymal and interstitial cells. Int. J. Mol. Sci. 2023;24(11):9159. DOI: 10.3390/ijms24119159.
33. Vudattu N.K., Waldron-Lynch F., Truman L.A., Deng S., Preston-Hurlburt P., Torres R., Raycroft M.T., Mamula M.J., Herold K.C. Humanized mice as a model for aberrant responses in human T cell immunotherapy. J. Immunol. 2014;193(2):587–596. DOI: 10.4049/jimmunol.1302455.
34. Wolkersdörfer G.W., Lohmann T., Marx C., Schröder S., Pfeiffer R., Stahl H.D., Scherbaum W.A., Chrousos G.P., Bornstein S.R. Lymphocytes stimulate dehydroepiandrosterone production through direct cellular contact with adrenal zona reticularis cells: a novel mechanism of immune-endocrine interaction. J. Clin. Endocrinol. Metab. 1999;84(11):4220–4227.
35. Zinserling V.A., Semenova N.Y., Markov A.G., Rybalchenko O.V., Wang J., Rodionov R.N., Bornstein S.R. Inflammatory Cell Infiltration of Adrenals in COVID-19. Horm. Metab. Res. 2020;52(9):639–641. DOI: 10.1055/a-1191-8094.
Рецензия
Для цитирования:
Тимофеева Н.Ю., Стручко Г.Ю., Меркулова Л.М., Кострова О.Ю., Стоменская И.С., Москвичев Е.В. Клеточный состав надпочечников крыс-самцов при введении уретана. БИОМЕДИЦИНА. 2025;21(2):71-80. https://doi.org/10.33647/2074-5982-21-2-71-80
For citation:
Timofeeva N.Yu., Struchko G.Yu., Merkulova L.M., Kostrova O.Yu., Stomenskaya I.S., Moskvichev E.V. Cellular Composition of Male Rat Adrenal Glands upon Urethane Administration. Journal Biomed. 2025;21(2):71-80. (In Russ.) https://doi.org/10.33647/2074-5982-21-2-71-80
Просмотров:
48
Послать статью по эл. почте 
