Экспериментальное исследование целесообразности периоперационного применения Мексидола для оптимизации приживления васкуляризованного кожно-фасциального лоскута

С целью определения целесообразности периоперационного применения Мексидола для оптимизации приживления васкуляризованного кожно-фасциального лоскута проведены опыты на крысах, у которых под общей анестезией был выкроен лоскут на основе поверхностной нижней эпигастральной артерии (SIEA). После 90-минутного периода клипирования бедренной артерии у места отхождения SIEA реплантирован. В опытной группе сразу после анестезии и через 2 ч после реплантации лоскута животным вводили Мексидол в дозе 50 мг/кг внутримышечно. Ультразвуковым флоуметром регистрировали объёмную скорость кровотока в артерии, питающей лоскут, после его элевации, в момент снятия клипсы с артерии и на протяжении 10 мин после снятия. Через 12 дней после операции животные эвтаназированы, в режиме макросъёмки получены цифровые изображения наружной и внутренней поверхности лоскутов. Методом компьютерной планиметрии в цифровых изображениях наружной поверхности лоскутов определена площадь дефектов эпидермиса, а при анализе изображений внутренней поверхности - доли сосудистых структур и экстравазаций. Для гистологического исследования и гистоморфометрии иссекали стандартные фрагменты кожи, парафиновые срезы окрашивали гематоксилином и эозином. У животных опытной группы по сравнению с контролем достоверно уменьшена относительная площадь дефектов эпидермиса (в 5,6 раза) и относительная площадь экстравазаций в гиподерме (в 2,1 раза), а толщина эпидермиса и численная плотность придатков кожи достоверно увеличены - в 1,5 и 1,9 раза соответственно. Сделан вывод о клинически значимом ангио- и дермопротективном эффекте периоперационных инъекций Мексидола.

васкуляризованный кожно-фасциальный лоскут, флоуметрия, гистоморфометрия, Мексидол

1. Галенко-Ярошевский В.П., Багметова Е.Н., Фильчукова И.А., Сидельников А.Ю., Попков В.А., Горелашвили А.С., Антелава Н.А., Сукоян Г.В. Антигипоксическое и антинекротическое действие мексидола при ишемии кожи // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2005. Т. 139. № 2. С. 170-175.

2. Кутянов Д.И., Родоманова Л.А. Современные принципы и тенденции использования осевых кровоснабжаемых лоскутов в реконструктивной хирургии конечностей // Травматология и ортопедия России. 2015. Т. 75. № 1. С. 106-145.

3. Лысов А.А., Кропотов М.А., Бржезовский В.Ж., Бекяшев А.Х., Соболевский В.А., Диков Ю.Ю. Реконструкция комбинированных дефектов свода черепа у больных со злокачественными опухолями волосистой части головы // Клин. и эксп. хир. журн. им. акад. Б.В. Петровского. 2015. № 4. С. 56-62.

4. Малиновская И.С., Семичев Е.В., Синичев Д.Н., Баранова Е.Н., Байтингер В.Ф., Малиновский С.В., Логвинов С.В. Клинико-морфологические аспекты адаптивно-интегративной реакции несвободного кожно-фасциального пахового лоскута при различных вариантах симпатэктомии сосудистой ножки // Сибирский медицинский журнал. 2009. № 4. С. 17-21.

5. Мухина И.В., Проданец H.H., Яковлева Е.И., Рахчеева М.В. Влияние мексидола на структуру стенки магистральных сосудов в постреперфузионном периоде // Морфология. 2006. Т. 129. № 4. 89 с.

6. Щудло Н.А., Щурова Е.Н., Щудло М.М., Сбродова Л.И. Влияние интраоперационных изменений кровотока в артерии, питающей кожно-фасциальный лоскут, на качество его приживления // Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2015. Т. 14. № 4(56). С. 74-79.

7. Яцук И.В., Сергеев С.А., Волков Е.В., Молокова О.М., Фишер В.В. Возможности коррекции операционного стресса посредством дополнительного включения в состав премедикации мексидола // Бюлл. эксп. биологии и медицины. Прил. 1. 2012. С. 145-147.

8. Gideroglu K., Alagos S., Uygur F., Evinc R., Celikoz B., Bugdayci G. Effects of nebivolol on skin flap survival: A randomized experimental study in rats // Current Therapeutic Research. 2008. Vol. 69. I. 5. P. 449-458.

9. Hsieh S.T., Lin W.M. Modulation of keratinocyte proliferation by skin innervation // J. of Investigative dermatology. 1999. Vol. 113. No. 4. P. 579-586.

10. Kozarski J., Lalković M., Vesanović S., Stojiljković V. Circulation, reinervation and histomorphologic changes in free flaps // Facta universitatis. Series: Medicine and biology. 2008. Vol. 15. No. 3. P. 92-96.

11. Krammer C.W., Ibrahim R.M., Hansen T.G., Sørensen J.A. The effects of epinephrine and dobutamine on skin flap viability in rats: a randomized double-blind placebo-controlled study // Plast. reconstr. aesthet. surg. 2015. Vol. 68. No. 1. P. 113-119.

12. Lian T.S., Compton A., Bowen R. Establishment of a cutaneous flap animal model to study platelet and leukocyte dynamics after ischemia-reperfusion injury // JAMA facial plast. surg. 2013. Vol. 15. No. 1. P. 47-50.

13. Liu P.Y., Liu K., Wang X.T., Rieger-Christ K.M., Tang J.B., Summerhayes I.C. Therapeutic angiogenesis for prefabrication of ischemic flaps with multiple growth factor gene transfers: a study in a rat model // Molecular therapy. 2005. No. 11. 267 р.

14. Lubiatowski P., Goldman C.K., Gurunluoglu R., Carnevale K., Siemionow M. Enhancement of epigastric skin flap survival by adenovirus-mediated VEGF gene therapy // Plast. & reconstr. surg. 2002. Vol. 109. No. 6. P. 1986-1993.

15. Moura T.D., Marques A.A., Bernal S.O., Gagliocca G.D., Gemperli R., Ferreira M.C. Study of the effect of streptokinase and allopurinol in island skin flaps submitted to prolonged ischemia: experimental study in rats // Rev. Assoc. med. bras. 2009. Vol. 55. No. 5. P. 601-605.

16. Pereira C.M., Figueiredo M.E., Carvalho R., Catre D., Assuncao J.P. Anesthesia and surgical microvascular flaps // Rev. Bras. anestesiol. 2012. Vol. 62. No. 4. P. 563-579.

17. Ranne J.O., Lahteenmaki P.T., Vaalasti A., Waris T.H., Lindholm T.S. Adequate blood flow is essential for reinnervation in neurovascular skin flaps // Scand. J. plast. reconstr. hand. surg. 1999. Vol. 33. I.7. P. 7-12.

18. Rodrigues S.F., Granger D.N. Role of blood cells in ischaemia-reperfusion induced endothelial barrier failure // Cardiovascular research. 2010. Vol. 87. P. 291-299.

19. Sengupta P. The laboratory rat: relating its age with human's // Int. J. Prev. med. 2013. Vol. 4. No. 6. P. 624-630.

20. Zhao L., Wang Y.B., Qin S.R., Ma X.M., Sun X.J., Wang M.L., Zhong R.G. Protective effect of hydrogen-rich saline on ischemia/reperfusion injury in rat skin flap // J. Zhejiang Univ. Sci. B. 2013. Vol. 14. No. 5. P. 382-391.

21. Zhang F.-G., Tang X.-F. New advances in the mesenchymal stem cells therapy against skin flaps necrosis // World J. Stem cells. 2014. Vol. 6. No. 4. P. 491-496.