Спонтанный хламидиоз у обезьян как модель хламидийной инфекции В
Аннотация
Впервые описаны проявления и течение хламидийной инфекции у низших обезьян. Применение раз-
работанных тест - систем верификации хламидий до вида, а также плазмидных и бесплазмидных вари-
антов Ch. trachomatis позволило повысить диагностическую значимость культурального метода. Уста-
новлена роль плазмиды у Ch. trachomatis, как фактора вирулентности. Выявлена в 52,4% случаев цирку-
ляция бесплазмидных вариантов Ch. trachomatis. Установлена принадлежность штаммов Ch. trachomatis
к генотипам E (бесплазмидный) и G (плазмидосодержащий). Штаммы различаются по способности ак-
кумулировать гликоген в хламидийных включениях в культуре клеток (у плазмидных вариантов), а так-
же по экспрессии гена incA на уровне белка. Генотипические и фенотипические свойства штаммов об-
условливают характер и тяжесть инфекционного процесса. Предложенные модифицированные культу-
ральный и молекулярно - генетические методы для верификации хламидий объективизируют оценку
генотипических и фенотипических свойств хламидий, оценивают выраженность инфекционного про-
цесса и прогнозируют исход хламидийной инфекции. Выявлено филогенетическое родство штаммов,
выделенных от обезьян, со штаммами, выделяемыми от человека. Приматы со спонтанной хламидий-
ной инфекцией могут применяться в качестве модели для апробации фармакологических препаратов.
работанных тест - систем верификации хламидий до вида, а также плазмидных и бесплазмидных вари-
антов Ch. trachomatis позволило повысить диагностическую значимость культурального метода. Уста-
новлена роль плазмиды у Ch. trachomatis, как фактора вирулентности. Выявлена в 52,4% случаев цирку-
ляция бесплазмидных вариантов Ch. trachomatis. Установлена принадлежность штаммов Ch. trachomatis
к генотипам E (бесплазмидный) и G (плазмидосодержащий). Штаммы различаются по способности ак-
кумулировать гликоген в хламидийных включениях в культуре клеток (у плазмидных вариантов), а так-
же по экспрессии гена incA на уровне белка. Генотипические и фенотипические свойства штаммов об-
условливают характер и тяжесть инфекционного процесса. Предложенные модифицированные культу-
ральный и молекулярно - генетические методы для верификации хламидий объективизируют оценку
генотипических и фенотипических свойств хламидий, оценивают выраженность инфекционного про-
цесса и прогнозируют исход хламидийной инфекции. Выявлено филогенетическое родство штаммов,
выделенных от обезьян, со штаммами, выделяемыми от человека. Приматы со спонтанной хламидий-
ной инфекцией могут применяться в качестве модели для апробации фармакологических препаратов.
Об авторах
В. В. Слободенюк
Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н.Габричевского, Москва
Россия
Россия
Н. Н. Каркищенко
Научный центр биомедицинских технологий РАМН, Московская область
Россия
Россия
С. С. Афанасьев
Россия
Б. А. Лапин
Россия
В. А. Алешкин
Россия
А. В. Караулов
Россия
Ю. В. Несвижский
Россия
С. Ю. Пчелинцев
Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н.Габричевского, Москва
Россия
Россия
Э. К. Джикидзе
НИИ медицинской приматологии РАМН, Сочи - Адлер
Россия
Россия
М. С. Афанасьев
Московская медицинская академия им. И.М.Сеченова, Москва
Россия
Россия
Е. А. Воропаева
Россия
Список литературы
1. Гречишникова О.Г., Слободе- нюк В.В., Алёшкин В.А., и др. Феноти- пическая характеристика штаммов хла- мидий, выделенных от человека и обе- зьян культуральным методом // Имму- нопатология, Аллергология, Инфектоло- гия, 2009. № 3, с. 36 - 45.
2. Дмитриев Г.А. Лабораторная диагностика бактериальных урогени- тальных инфекций. М.: Медицинская книга, Н.Новгород: Издательство НГМА, 2003. с. 336.
3. Козлова В.И., Пухнер А.Ф. Ви- русные, хламидийные и микоплазменные заболевания гениталий / Руководство для врачей, издание 6 - е, обновленное и до- полненное. М.:Триада - Х, 2003.С. 483,
4. Лобзин Ю.В., Лященко Ю.И., Позняк А.Л. Хламидийные инфекции. Руководство для врачей. СПб.: ООО «Изд - во Фолиант», 2003.С. 400,
5. Метельская В.А., Алешкин В.А., Зверев В.В. и др. Современные ме- тоды лабораторной диагностики хлами- диозов // Журн. Микробиол, № 4, 2008.С. 111 - 117.
6. Савичева А.М., СоколовскийЕ.В., Домейка М. Краткое руководство по микроскопической диагностике ин- фекций, передаваемых половым путем. СПб.: Фолиант, 2004. С. 128,
7. Слободенюк В.В., КарауловА.В., Алешкин В.А., и др. Генотипиро- вание и анализ антибиотикорезистентно- сти штаммов Chlamydia trachomatis, вы- деленных от человека и обезьян // Имму- нопатология, Аллергология, Инфектоло- гия, 2009. № 4, с.74 - 81.
8. Слободенюк В.В., Алёшкин В.А., Лапин Б.А., и др. ПЦР - детекция и идентификация возбудителей хламидий- ных инфекций человека и обезьян // Им- мунопатология, Аллергология, Инфек- тология, 2009. № 3, с. 45 - 54.
9. Слободенюк В.В., АлешкинВ.А., Афанасьев С.С. и др. Сравнитель- ная характеристика методов верифика- ции Chlamydia trachomatis у человека и обезьян // Естественные науки, 2009. № 1 (26), с.65 - 71.
10. Слободенюк В.В., Алешкин В.А., Афанасьев С.С., и др. Способ про- гнозирования манифестной или стер- той формы хламидийной инфекции че- ловека или обезьян и набор для его осу- ществления // Пат. № 2385945 РФ МПК C 12 Q 1/68; заявитель и патентообла- датель ФГУН МНИИЭМ им. Г.Н. Га- бричевского Роспотребнадзора. - № 2008151548/13; заявл. 26.12.2008; зарег. во ФГУП «Роспатент» 10.04.2010. Опу- бликовано: 10.04.2010 Бюл. № 10.
11. Слободенюк В.В., Алешкин В.А., Афанасьев С.С., и др. Способ ди- агностики хламидийной инфекции че- ловека или обезьян и набор для его осу- ществления // Пат. № 2385946 РФ МПК C 12 Q 1/68;
12. Спонтанный хламидиоз у обезьян как модель хламидийной инфекции датель ФГУН МНИИЭМ им. Г.Н. Га- бричевского Роспотребнадзора. - № 2008151550/13; заявл. 26.12.2008; зарег. во ФГУП «Роспатент» 10.04.2010. Опу- бликовано: 10.04.2010 Бюл. № 10.
13. Anttila T., Saikku P., Koskela P. et al. Serotypes of Chlamydia trachomatis and risk for development of cervical squamous cell carcinoma // JAMA, 2001. Vol. 285, N. 1, P. 47 - 51.
14. Brenciani A., Bacciaglia A., Vecchi M. et al. Genetic Elements Carrying erm(B) in Streptococcus pyogenes and Association with tet(M) Tetracycline Resistance Gene // Antimicr. Agents and chemotherapy, 2007. Vol. 51, N. 4, P. 1209 - 1216.
15. Carlson J.H., Whitmire W.M., Crane D.D., Wicke L., Virtaneva K. The Chlamydia trachomatis Plasmid Is a Transcriptional Regulator of Chromosomal Genes and a Virulence Factor // Infection and Immunity, 2008. Vol. 76, N. 6, Р. 2273 - 2283.
16. Dugan J., Rockey D.D., Jones L., Andersen A.A. Tetracycline Resistance in Chlamydia suis Mediated by Genomic Islands Inserted into the Chlamydial inv - Like Gene // Antimicr. Agents and chemotherapy, 2004. Vol. 48, N. 10, P. 3989 - 3995.
17. Everett K. D., Andersen A. A. The ribosomal intergenic spacer and domain I of the 23S rRNA gene are phylogenetic markers for Chlamydia spp. // Int. J. Syst. Bacteriol, 1997. Vol. 47, No. 2, Р. 46 - 473. 17. Gaydos C.A. Chlamydia pneumonia and its proposed link to multiple sclerosis: To be or not to be? // Neurology, 2001. Vol. 56, P. 1126 - 1127.
18. Koskela P., Anttila T., Bjorge T. et al. Chlamydia trachomatis infection as a risk factor for invasive cervical cancer // Int. J. Cancer, 2000. Vol. 85, No. 1, P. 35 - 39.
19. Mahony J. B., Kathy E. Luinstra, John W. Sellors and Max A. Chernesky, Comparison of Plasmid - and Chromosome - Based Polymerase Chain Reaction Assays for Detecting Chlamydia trachomatis Nucleic Acids// Clin. Microb., 1993. Vol. 31, No. 7, P. 1753 - 1758.
20. Morre S.A., Rozendaal L., van Valkengoed I.G. et al. Urogenital Chlamydia trachomatis serovars in men and women with a symptomatic or asymptomatic infection: an association with clinical manifestations? // J. Clin. Microbiol, 2000. Vol. 38, No. 6, P. 2292 - 2296.
21. Norton R., Schepetiuk S., Kok T. Chlamydia pneumoniae with endocarditis // Lancet, 1995. Vol. 345, N. 8961, P. 1376 - 1377.
22. Pannekoek Y., Spaargaren J., Ankie A.J. et al. Interrelationship between Polymorphisms of incA, Fusogenic Properties of Chlamydia trachomatis Strains, and Clinical Manifestations in Patients in The Netherlands // Clin. Microbiol, 2005. Vol. 43, No. 5, Р. 2441 - 2443.
23. Stothard D.R., Williams J.A. Identification of a Chlamydia trachomatis Serovar E Urogenital Isolate Which Lacks the Cryptic Plasmid // Infection and Immunity, 1998. Vol. 66, No. 12, Р. 6010 - 6013.
24. Suchland R.J., Rockey D.D., Weeks S.K. et al. Development of Secondary Inclusions in Cells Infected by Chlamydia trachomatis //Infection and Immunity, 2005. Vol. 73, No. 7, Р. 3954 - 3962.
25. Suchland R.J., Rockey D.D., Bannantine J.P., Stamm W.E. Isolates of Chlamydia trachomatis Lack IncA, a Protein Localized to the Inclusion Membrane // Infection and Immunity, 2000. Vol. 68, No. 1, Р. 360 - 367.
26. Wesley C. Van Voorhis, Lynn K. Barrett еt all. Repeated Chlamydia trachomatisInfectionofMacaca nemestrina Fallopian Tubes Produces a Th1 - Like Cytokine Response Associated with Fibrosis and Scarring// Infection and Immunity, 1997. Vol. 65, No. 6, P. 2175 - 2182.
27. Zhongyu Li, Ding Chen, Youmin Zhong et al. The Chlamydial Plasmid - Encoded Protein pgp3 Is Secreted into the Cytosol of Chlamydia - Infected Cells // Infection and Immunity, 2008. Vol. 76, No. 8, Р. 3415 - 3428.
Для цитирования:
Слободенюк В.В., Каркищенко Н.Н., Афанасьев С.С., Лапин Б.А., Алешкин В.А., Караулов А.В., Несвижский Ю.В., Пчелинцев С.Ю., Джикидзе Э.К., Афанасьев М.С., Воропаева Е.А. Спонтанный хламидиоз у обезьян как модель хламидийной инфекции В. БИОМЕДИЦИНА. 2010;1(5):6-16.
Просмотров: 56
Послать статью по эл. почте 