Preview

БИОМЕДИЦИНА

Расширенный поиск

Культура дифференцированных нейронов взрослого моллюска - альтернативная модель изучения процессов регенерации нервной системы

Аннотация

Культура дифференцированных нейронов in vitro рассматривается как модель для
изучения процессов регенерации нервной системы в криомедицине. Кратко описана
история развития метода культуры клеток in vitro и возможность его практического
применения в нейробиологиии. Дается описание модельного объекта - мозга пре-
сноводного моллюска Lymnaea stagnalis L. - для изучения процессов восстановления
нейронов, прошедших криоконсервацию (замораживание при -196°С). Метод культи-
вирования in vitro нейронов беспозвоночных в настоящее время является перспек-
тивным для проблем биомедицины.

Об авторах

Н. А. Ивличева
2Пущинский государственный университет, Пущино, Моск. обл
Россия


Э. Н. Гахова
1Институт биофизики клетки РАН, Пущино, Моск обл
Россия


Список литературы

1. Бабийчук Г.А. Ломако В.В., Шуляк Л.И.,Шило А.В. Ломакин И.И. Функциональ- ное состояние фрагментов эмбрио- нальной нервной ткани после гипотер- мического хранения и трансплантации реципиенту. // Проблемы криобиологии. № 2, с.40-48. 2000.

2. Гахова Э.Н., Дмитриева Е.В. Криоконсервация нервной ткани // Биофизика живой клетки, Т.7, с.65-68 (http:// cam.iteb.psn.ru/). 2003.

3. Гахова Э.Н., Чекурова Н.Р., Кислов А.Н., Вепринцев Б.Н. Гигантские нейроны сохраняют жизнеспособность после глубокого замораживания мозга пре- сноводного моллюска Lymnaea stag- nalis L. // Криобиология. № 1, с.19-21. 1989.

4. Гольцев А.Н., Гурина Т.М., Бабенко Н.Н.,Останков М.В. Влияние различных ре- жимов криоконсервирования на неко- торые характеристики эмбриональных нервныхклеток//Проблемы криобиологии, № 1, с.46-50. 2003.

5. Дмитриева Е.В. Структурно-функцио- нальные изменения нейронов моллю- ска Lymnaea stagnalis L. после крио- консервации. - Автореф. дис … канд. биол. наук. - Пущино, 22с. 2004.

6. Дмитриева Е.В., Мошков Д.А., Гахова Е.Н. Ультраструктурные изменения нейрона МП3 моллюска Lymnaea stagnalis L. после криоконсервации изолированного мозга // Цитология, Т. 48. № 6, с. 2006.

7. Дьяконова Т.Л., Вепринцев Б.Н. Осо- бенности структурной и функциональ- ной организации и метаболической активности нейронов прудовика // ВИНИТИ. № 816-69. 1969.

8. Ивличева Н.А., Дмитриева Е.В., Кос- тенко М.А., Гахова Э.Н. Криоконсер- вированные нейроны моллюска спо- собны к морфологической дифферен- цировке в культуре in vitro // Биофизи- ка, Т.49, вып. 4, с.710-714. 2004.

9. Костенко М.А. Внутриклеточная регуля- ция дифференцировки и регенерации нейронов в культуре. - Автореф. дис … докт. биол. наук. - Пущино, 360с. 1985.

10. Мякишева С.Н., Костенко М.А. Роль хе- мотропизма и аутокринной регуляции в образовании межнейронных связей. // Цитология. Т.43, № 4, с.370. 2001.

11. Пол Д. Культура клеток и тканей. - Медгиз, 1963.

12. Сотников О.С., Богута К.К., Голубев А.И.,Миничев Ю.С. Механизмы структурной пластичности нейронов и филогенез нервной системы. - С.-Пб.: Наука, 1994.

13. Чекурова Н.Р. Использование элект- рофизиологического метода для изу- чения механизмов криоповрежде- ний и способов криозащиты. // Био- физика живой клетки, Т.6, с.121-126. 1994.

14. Armitage W.J., Juss B.K., Easty D.L. Differing effects of various cryoprotecants on intercellular junctions of epithelial cells // Cryobiology. V.32, p.52-59. 1995.

15. Benjamin P.R., Staras K., and Kemenes G. A Systems Approach to the Cellular Analysis of Associative Learning in the Pond Snail Lymnaea. // J. Neurophysiol., May/June. V.7, № 3, p.124-131. 2000.

16. Bray D. Membrane biophysics: the dynamics of growing axons. // Current biology, V.6, № 3. p.241-243. 1996.

17. Brunet J-F., Pellerin L., Magostretti P., Villemure J-G. Cryopreservation of human brain tissue allowing timely production of viable human brain cells for autologous transplantation // Cryobiology. V.47, № 2, p.179-183. 2003.

18. Collier T.J., Gallagher M.J., Sladek C.D. Cryopreservation and storage of embryon- ic rat mesencephalic dopamine neurons for one year: comparison to fresh tissue in culture and neural grafts // Brain Res.; 623(2):249-56. 1993.

19. Frodl E., Duan W.M., Sauer H., Kupsch A.,Brundin P. Human embryonic dopamine neurons xenografted to the rat: effects of cryopreservation and varying regional souce of donor cells on transplant survival, morphology and function.// Brain.Res. V.647, p.286-298. 1994.

20. Gakhova E.N., Kislov A.N., Chekurova N.R. Study of membrane properties of mollusc neuron after freeze-storage at liquid nitro- gen temperature for 8 years.// Cryopreservation of testis of frog Rana tem- poraria. Infusionsther.Trasfusiosmed. V.24, № 5. p.378-379. 1997.

21. Houle J.D., Das G.D. Freezing of embry- onic neural tissue and its transplantation in the rat brain // Brain Res. V. 192, p.570- 574. 1980.

22. Koert C.E., Spencer G.E., Minnen J. et al. Functional Implications of Neurotransmitter Expression during Axonal Regeneration: Serotonin, But Not Peptides, Auto-Regulate Axon Growth of an Identified Central Neuron. // J. Neurosc., August 1, 21(15): 5597-5606. 2001.

23. Kohama I., Lankford K.L., Preiningerova J. et al. Transplantation of Cryopreserved Adult Human Schwann Cells Enhances Axonal Conduction in Demyelinated Spinal Cord. // J. Neurosc., February 1, 21(3):944-950. 2001.

24. Kostenko M.A., Myakisheva S.N. The Role of Chemotaxis in Morphological Differentiation of Mollusc Neurons. Comp. // Biochem. Physiol., V.115A, № 3, p.265-268. 1996.

25. Koopmans J., Hogen E.I., Copray S. et al. Cryopreservation of porcine fetal ventral mesencephalic tissue for intrastriatal transplantation in Parkinson's disease // Cell Transplant.;10(7):573-81. 2001.

26. Luyet B., Gonzales F. Growth of nerve tis- sue after freezing in liquid nitrogen // Biodynamica. V. 7, p.171-173. 1953.

27. Moscona A.A., Moscona H. The dissocia- tion and aggregation of cells from organ rudiments of the ear ly chick embryo. //J. Anat. Lond., V. 86, p.287. 1952.

28. Negishi T., Ishii Y., Kawamura S. et al. Cryopreservation of brain tissue for primary culture // Exp.Anim., Jul;51(4):383-90. 2002.

29. Pasic M., De sa Faria L.J. Effects and freez- ing on abdominal ganglia of Aplysia // Cryobiology. V. 16, p.390-400. 1979.

30. Pichugin Yu., Fahy G.M., Morin R. Cryopreservation of rat hippocampal slices by vitrification // Cryobiology. V.52, p.228-240. 2006.

31. Silani V., Pizzuti A., Strada O. et al. Human neuronal cell viability demon- strated in culture after cryopreservation // Brain Res. V. 473, № 1, p.169-174. 1988.

32. Spafford J.D., Munno D.W., Nierop P. et al. Calcium Channel Structural Determinants of Synaptic Transmission between Identified Invertebrate Neurons. // J. Biol. Chem., Feb. 7, Vol. 278, Issue 6, 4258-4267. 2003.

33. Spencer G.E., Lukowiak K., Syed N. I. Transmitter-receptor interactions between growth cones of identified Lymnaea neurons determine target cell selection in vitro // J. of Neurosc., Nov.1, 20(21):8077-8086. 2000.

34. Syed N., Richardson P., Bulloch A. Ciliary neurotrophic factor, unlike nerve growth fac- tor, supports neurite outgrowth but synapse formation by adult Lymnaea neurons //J.Neurobiol., V. 29, № 3, p.293-303. 1996.

35. Wildering W. C., Hermann P. M., Bulloch A.G.M. Lymnaea Epidermal Growth Factor Promotes Axonal Regeneration in CNS Organ Culture // J. of Neurosc., Dec. 1, 21(23):9345-9354. 2001.


Для цитирования:


Ивличева Н.А., Гахова Э.Н. Культура дифференцированных нейронов взрослого моллюска - альтернативная модель изучения процессов регенерации нервной системы. БИОМЕДИЦИНА. 2007;1(1):89-96.

Просмотров: 50


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2074-5982 (Print)
ISSN 2074-5982 (Online)