Оценка эффективности использования фенолсодержащих комплексов из различных частей рябины обыкновенной (Sorbus aucuparia L.) в онкологическом эксперименте

Рябина обыкновенная (Sorbus aucuparia L.) является ярким представителем фенолсодержащих лекарственных растений. Широко распространённое и культивируемое растение имеет достаточную сырьевую базу не только плодов, но и других частей растения (листьев, цветков); является перспективным источником биологически активных комплексов для разработки новых лекарственных средств. В работе установлено содержание основных групп фенольных соединений в экстрактах из плодов, листьев и цветков S. aucuparia L., которые получали по оригинальной технологии подкисленным 95%-ным этанолом. Определяли содержание суммы фенольных соединений, а также флавоноидов, в т. ч. антоцианов, фенолокислот, дубильных веществ. Изучено влияние данных фенолсодержащих экстрактов на развитие перевиваемых опухолей (карцинома легких Льюис, рак лёгкого-67) и эффективность лечения циклофосфаном. Выявлено, что использование растительных комплексов приводит к достоверной ингибиции развития метастазов в лёгких, а также повышению противоопухолевой и противометастатической активности циклофосфана в комбинированном лечении. Полученные новые данные представляют интерес для дальнейшего изучения этих фенолсодержащих комплексов с целью создания на их основе лекарственных средств для повышения эффективности химиотерапии злокачественных новообразований.

1. Гольдберг Е.Д., Разина Т.Г., Зуева Е.П., Амосова Е.Н., Крылова С.Г., Гольдберг В.Е. Растения в комплексной терапии опухолей. М.: Изд-во РАМН, 2008:232.

2. Государственная Фармакопея Российской Федерации: научное издание. М.: Минздрав России, 2018:1004.

3. Государственный реестр лекарственных средств: научное издание. М.: Минздрав России, 2020:1006.

4. Зверев Я.Ф. Противоопухолевая активность флавоноидов. Бюллетень сибирской медицины. 2019;18(2):181–194.

5. Зиновьева В.Н., Спасов А.А. Механизмы антиканцерогенных эффектов растительных полифенолов I. Блокирование инициации канцерогенеза. Биомедицинская химия. 2012;58(2):160–175.

6. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1980;293.

7. Наволокин Н.А., Полуконова Н.В., Маслякова Г.Н., Скворцова В.В., Байтман Т.П., Бучарская А.Б., Дурнова Н.А. Противоопухолевая активность растительных экстрактов, содержащих биофлавоноиды. Российский биотерапевтический журнал. 2013;12(2):59.

8. Переводчикова Н.И. Руководство по химиотерапии опухолевых заболеваний. М.: Практическая медицина, 2005:704.

9. Растительные ресурсы России: дикорастущие цветковые растения, их компонентный состав и биологическая активность. Т. 2. Семейства Actinidiaceae — Malvaceae, Euphorbiaceae — Haloragaceae. СПб.; М.: Товарищество научных изданий КМК, 2009:243–245.

10. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. Под ред. Р.У. Хабриева. М.: Медицина, 2005:832.

11. Самбукова Т.В., Овчинников Б.В., Ганапольский В.П., Ятманов А.Н., Шабанов П.Д. Пер спективы использования фитопрепаратов в современной фармакологии. Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2017;15(2):56–63.

12. Тараховский Ю.С., Ким Ю.А., Абдрасилов Б.С., Музафаров Е.Н. Флавоноиды: биохимия, биофизика, медицина. Пущино: Sуnchrobook, 2013:310.

13. Adams L.S., Phung S., Yee N., Seeram N.P., Li L., Chen S. Blueberry phytochemicals inhibit growth andmetastatic potential of MDA-MB-231 breast cancer cells through modulation of the phosphatydilinositol 3-kinase pathway. Cancer Res. 2010;70(9):3594–3605. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-09-3565.

14. Adams L.S., Kanaya N., Phung S., Liu Z., Chen S. Whole blueberry powder modulate the growth and metastases of MDA-MB-231 triple negative breast tumors in nude mice. J. Nutr. 2011;141(10):1805–1812. DOI: 10.3945/jn.111.140178.

15. Bobinaitė R., Grootaert C., Van Camp J., Šarkinas A., Liaudanskas M., Žvikas V., Viškelis P., Rimantas Venskutonis P. Chemical composition, antioxidant, antimicrobial and antiproliferative activities of the extracts isolated from the pomace of rowanberry (Sorbus aucuparia L.). Food Res. Int. 2020;136:109310. DOI: 10.1016/j.foodres.2020.109310.

16. Heim K.E., Tagliaferro A.R., Bobilya D.J. Flavonoid antioxidants: Chemistry, metabolism and structure-activity relationships. J. Nutr. Biochem. 2002;13(10):572–584. DOI: 10.1016/s0955-2863(02)00208-5.

17. Huayi H.Y., Nong C.Z., Cuo L.X. The proliferation inhibition effect and apoptosis induction of Mangiferin on BEL-7404 human hepatocellular carcinoma cell. Chinese J. Dig. 2002;16(22):341–343.

18. Isaikina N.V., Kalinkina G.I., Razina T.G. Zueva E.P., Rybalkina O.Yu., Ulirich A.V., Fedorova E.P., Shilova A.B. Sorbus aucuparia L. fruit is a source of the drug for increasing the efficiency of tumor chemotherapy. Russ. J. Bioorg. Chem. 2018;44(7):899–905. DOI: 10.1134/S1068162018070038

19. Iwashima T., Kudome Y., Kishimoto Y., Saita E., Tanaka M., Taguchi C., Hirakawa S., Mitani N., Kondo K., Iida K. Aronia berry extract inhibits TNF-α-induced vascular endothelial inflammation through the regulation of STAT3. Food Nutr. Res. 2019;63:175–186. DOI: 10.29219/fnr.v63.3361.

20. Middleton E., Kandaswami C., Theoharides T.C. The effect of plant flavonoids on mammalian cells: Implication for inflammation, heart disease and cancer. Pharmacol. Rev. 2000;52(4):673–751.

21. Moon S.C., Choi H.J., Chung T.W., Lee J.H., Lee S.O., Jung M.H., Kim B.J., Choi J.Y., Ha K.T. Sorbus commixta water extract induces apoptotic cell death via a ROS-dependent pathway. Oncol. Lett. 2018;16(4):4193–4200. DOI: 10.3892/ol.2018.9217.

22. Sarv V., Venskutonis P.R., Bhat R. The Sorbus spp. – underutilised plants for foods and nutraceuticals: Review on polyphenolic phytochemicals and antioxidant potential. Antioxidants (Basel). 2020;9(9):813. DOI: 10.3390/antiox9090813.

23. Sołtys A., Galanty A., Podolak I. Ethnopharmacologically important but underestimated genus Sorbus: A comprehensive review. Phytochem. Rev. 2020;19:491–526. DOI: 10.1007/s11101-020-09674-9

24. Wang S.Y., Jiao H. Scavenging capacity of berry crops on superoxide radicals, hydrogen peroxide, hydroxyl radicals and singlet oxygen. J. Agric. Food Chem. 2000;48(11):5677–5684. DOI: 10.1021/jf000766i.