Показатели белкового, липидного и углеводно-энергетического обмена у крыс в условиях воздействия острого и хронического гипокинетического стресса и их комбинаций

В статье представлены результаты изучения показателей белкового, липидного и углеводно-энергетического обмена у крыс в условиях воздействия острого (ОС) и хронического гипокинетического стресса (ГС) и их комбинаций. Показано, что ГС и его комбинации с ОС в той или иной степени снижали показатели белкового обмена, являясь причиной отрицательного азотистого баланса в организме; повышали показатели липидного обмена, являющиеся факторами атерогенеза в организме (уровень общего холестерина, триглицеридов, липопротеиды низкой плотности); достоверно повышали уровень глюкозы и снижали активность креатининкиназы. ОС, ГС и их комбинации достоверно увеличивали активность лактатдегидрогеназы.

1. Абрамова А.Ю., Перцов А.С., Коплик Е.В., Перцов С.С. Влияние экспериментального хронического стресса на состояние углеводного обмена у крыс с разными характеристиками поведения . Бюллетень медицинской науки. 2018;9(1):21-25.

2. Агаджанян Н. А., Коновалова Г. М., Ожева Р. Ш., Уракова Т. Ю. Воздействие внешних факторов на формирование адаптационных реакций организма человека. Новые технологии. 2010;2:142-144.

3. Бородин Е.А. Биохимия и клиническая лабораторная диагностика. Благовещенск: Амурская ГМА Минздрава России, 2021.

4. Бутова О. А., Масалов С. В. Адаптация к физическим нагрузкам: анаэробный метаболизм мышечной ткани. Вестник Нижегородского университета им. Н.И. Лобачевского. Биология. 2011;1:123-128.

5. Ганеева Л. А., Скрипова В. С., Касатова Л. В., Набиуллина Р. М., Абрамова З. И. Оценка некоторых биохимических параметров энергетического обмена у студентов-легкоатлетов после продолжительной нагрузки. Ученые записки Казанского университета. Серия Естественные науки. 2013;155(1):40-49.

6. Глазачев О. С., Крыжановская С. Ю. Адаптационная медицина: стратегия психофизиологического приспособления человека к критически измененной окружающей среде. Вестник Международной академии наук. Русская секция. 2019;1:48-55.

7. Западнюк И. П., Западнюк В. И., Захария Е. А. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте. Киев: Вища школа, 1983.

8. Зенько М. Ю., Рыбникова Е . А . Перекрёстная адаптация: от Ф. З. Меерсона до наших дней. Ч. 1. Адаптация, перекрестная адаптация и перекрестная сенсибилизация. Успехи физиологических наук. 2019;50(4):3-13. DOI: 10.1134/S0301179819040088.

9. Клёнова Н.А. Биохимия патологических состояний. Самара: Самарский университет, 2006.

10. Климов А.Н., Никульчева Н.Г. Липиды, липопротеиды и атеросклероз. СПб.: Питер, 1995.

11. Макаров В.Н., Макарова М.Н. Справочник. Физиологические, биохимические и биометрические показатели нормы экспериментальных животных. СПб.: ЛЕМА, 2013.

12. Небыльцова О.В., Климова Ж.А., Носенко Г.А., Бойко И. В., Клишня М. А., Чернышова Л. А., Князева Л. П., Маликова С. В., Данилова И. Е., Абашева С. Н., Дегтяренко О. А., Прищепа Л. А. Лабораторный справочник Синэво. Киев: Доктор-Медиа, 2011.

13. Allain C., Poon L., Chan G., Richmond W., Fu C. Enzymatic determination of total serum cholesterol. Clin. Chem. 1974;20(4):470-475.

14. Barcham D., Trinder P. An improved color reagent for the determination of blood glucose by the oxidase systeme. Analyst. 1972;97(151):142-145. DOI: 10.1039/an9729700142.

15. Barr D.P., Russ E.M., Eder H.A. Protein-lipid relationships in human plasma. II. In atherosclerosis and related conditions. Am. J. Med. 1951;11(4):480-493. DOI: 10.1016/0002-9343(51)90183-0.

16. Burtis C.A., Ashwood E.R., Bruns D.E. Tietz textbook of clinical chemistry and molecular diagnostics. 5th ed. St. Louis: Elsevier, 2012.

17. Cornall A.G., Bardawill C.J., David M.M. Determination of serum proteins by means of the biuret reaction. J. Biol. Chem. 1949;177(2):751-766.

18. Fossati P., Prencipe L., Berti G. Use of 3,5-di-chloro-2-hydroxybenzenesulfonic acid/4-amino-phenazone chromogenic system in direct enzymic assay of uric acid in serum and urine. Clin. Chem. 1980;26(2):227-231.

19. Henry R.J., Chiamori N., Golub O.J., Berkman S. Revised spectrophotometric methods for the determination of glutamic-oxalacetic transaminase, glutamic-pyruvic transaminase, and lactic acid dehydrogenase. Am. J. Clin. Path. 1960;34:381-398. DOI: 10.1093/ajcp/34.4_ts.381.

20. Nauk M., Wiebe D., Warnick G. Measurement of high-density-lipoprotein cholesterol. Handbook of lipoprotein testing. 2nd ed. Washington DC: AACC Press, 2001:221-244.

21. Pisani T., Gebski C.P., Leary E.T., Warnick G.R., Ollington J.F. Accurate direct determination of low-density lipoprotein as accurate direct determination of low-density lipoprotein assay. Arch. Pathol. Lab. Med. 1995;119(12):1127-1135.

22. Porsolt R.D., McArthur R.A., Lenegre A. Psychotropic screening procedures. In: Methods in Behavioral Pharmacology. Amsterdam: Elsevier, 1993:23-51. DOI: 10.1016/B978-0-444-81444-9.50007-9.

23. Roeschlau P., Bernt E., Gruber W.A. Enzymatische Bestimmung des Gesampt-Cholesterins in serum. Clin. Chem. Clin. Biochem. 1974;12(5):226-227.

24. Schumann G., Bonora R., Ceriotti F., Clerc-Renaud P., Ferrero C.A., Ferard G., Franck P.F., Gella F.J., Hoelzel W., J0rgensen P.J., Kanno T., Kessner A., Klauke R., Kristiansen N., Lessinger J.M., Linsinger T.P., Misaki H., Panteghini M., Pauwels J., Schimmel H.G., Vialle A., Weidemann G., Siekmann L. IFCC primary reference procedures for the measurement of catalytic activity concentrations of enzymes at 37°C. Part 3. Reference procedures for the measurement of catalytic concentrations of lactate dehydrogenase. Clin. Chem. Lab. Med. 2002;40(6):643-648. DOI: 10.1515/CCLM.2002.111.

25. Stein W. Creatine kinase (total activity), creatine kinase isoenzymes and variants. In: Clinical laboratory diagnostics: Use and Assessment of Clinical Laboratory Results. Frankfurt: TH-Books Verlagsgesellschaft, 1998:71-80.