Культура дифференцированных нейронов взрослого моллюска - альтернативная модель изучения процессов регенерации нервной системы
Abstract
изучения процессов регенерации нервной системы в криомедицине. Кратко описана
история развития метода культуры клеток in vitro и возможность его практического
применения в нейробиологиии. Дается описание модельного объекта - мозга пре-
сноводного моллюска Lymnaea stagnalis L. - для изучения процессов восстановления
нейронов, прошедших криоконсервацию (замораживание при -196°С). Метод культи-
вирования in vitro нейронов беспозвоночных в настоящее время является перспек-
тивным для проблем биомедицины.
About the Authors
Н. ИвличеваRussian Federation
Э. Гахова
Russian Federation
References
1. Бабийчук Г.А. Ломако В.В., Шуляк Л.И.,Шило А.В. Ломакин И.И. Функциональ- ное состояние фрагментов эмбрио- нальной нервной ткани после гипотер- мического хранения и трансплантации реципиенту. // Проблемы криобиологии. № 2, с.40-48. 2000.
2. Гахова Э.Н., Дмитриева Е.В. Криоконсервация нервной ткани // Биофизика живой клетки, Т.7, с.65-68 (http:// cam.iteb.psn.ru/). 2003.
3. Гахова Э.Н., Чекурова Н.Р., Кислов А.Н., Вепринцев Б.Н. Гигантские нейроны сохраняют жизнеспособность после глубокого замораживания мозга пре- сноводного моллюска Lymnaea stag- nalis L. // Криобиология. № 1, с.19-21. 1989.
4. Гольцев А.Н., Гурина Т.М., Бабенко Н.Н.,Останков М.В. Влияние различных ре- жимов криоконсервирования на неко- торые характеристики эмбриональных нервныхклеток//Проблемы криобиологии, № 1, с.46-50. 2003.
5. Дмитриева Е.В. Структурно-функцио- нальные изменения нейронов моллю- ска Lymnaea stagnalis L. после крио- консервации. - Автореф. дис … канд. биол. наук. - Пущино, 22с. 2004.
6. Дмитриева Е.В., Мошков Д.А., Гахова Е.Н. Ультраструктурные изменения нейрона МП3 моллюска Lymnaea stagnalis L. после криоконсервации изолированного мозга // Цитология, Т. 48. № 6, с. 2006.
7. Дьяконова Т.Л., Вепринцев Б.Н. Осо- бенности структурной и функциональ- ной организации и метаболической активности нейронов прудовика // ВИНИТИ. № 816-69. 1969.
8. Ивличева Н.А., Дмитриева Е.В., Кос- тенко М.А., Гахова Э.Н. Криоконсер- вированные нейроны моллюска спо- собны к морфологической дифферен- цировке в культуре in vitro // Биофизи- ка, Т.49, вып. 4, с.710-714. 2004.
9. Костенко М.А. Внутриклеточная регуля- ция дифференцировки и регенерации нейронов в культуре. - Автореф. дис … докт. биол. наук. - Пущино, 360с. 1985.
10. Мякишева С.Н., Костенко М.А. Роль хе- мотропизма и аутокринной регуляции в образовании межнейронных связей. // Цитология. Т.43, № 4, с.370. 2001.
11. Пол Д. Культура клеток и тканей. - Медгиз, 1963.
12. Сотников О.С., Богута К.К., Голубев А.И.,Миничев Ю.С. Механизмы структурной пластичности нейронов и филогенез нервной системы. - С.-Пб.: Наука, 1994.
13. Чекурова Н.Р. Использование элект- рофизиологического метода для изу- чения механизмов криоповрежде- ний и способов криозащиты. // Био- физика живой клетки, Т.6, с.121-126. 1994.
14. Armitage W.J., Juss B.K., Easty D.L. Differing effects of various cryoprotecants on intercellular junctions of epithelial cells // Cryobiology. V.32, p.52-59. 1995.
15. Benjamin P.R., Staras K., and Kemenes G. A Systems Approach to the Cellular Analysis of Associative Learning in the Pond Snail Lymnaea. // J. Neurophysiol., May/June. V.7, № 3, p.124-131. 2000.
16. Bray D. Membrane biophysics: the dynamics of growing axons. // Current biology, V.6, № 3. p.241-243. 1996.
17. Brunet J-F., Pellerin L., Magostretti P., Villemure J-G. Cryopreservation of human brain tissue allowing timely production of viable human brain cells for autologous transplantation // Cryobiology. V.47, № 2, p.179-183. 2003.
18. Collier T.J., Gallagher M.J., Sladek C.D. Cryopreservation and storage of embryon- ic rat mesencephalic dopamine neurons for one year: comparison to fresh tissue in culture and neural grafts // Brain Res.; 623(2):249-56. 1993.
19. Frodl E., Duan W.M., Sauer H., Kupsch A.,Brundin P. Human embryonic dopamine neurons xenografted to the rat: effects of cryopreservation and varying regional souce of donor cells on transplant survival, morphology and function.// Brain.Res. V.647, p.286-298. 1994.
20. Gakhova E.N., Kislov A.N., Chekurova N.R. Study of membrane properties of mollusc neuron after freeze-storage at liquid nitro- gen temperature for 8 years.// Cryopreservation of testis of frog Rana tem- poraria. Infusionsther.Trasfusiosmed. V.24, № 5. p.378-379. 1997.
21. Houle J.D., Das G.D. Freezing of embry- onic neural tissue and its transplantation in the rat brain // Brain Res. V. 192, p.570- 574. 1980.
22. Koert C.E., Spencer G.E., Minnen J. et al. Functional Implications of Neurotransmitter Expression during Axonal Regeneration: Serotonin, But Not Peptides, Auto-Regulate Axon Growth of an Identified Central Neuron. // J. Neurosc., August 1, 21(15): 5597-5606. 2001.
23. Kohama I., Lankford K.L., Preiningerova J. et al. Transplantation of Cryopreserved Adult Human Schwann Cells Enhances Axonal Conduction in Demyelinated Spinal Cord. // J. Neurosc., February 1, 21(3):944-950. 2001.
24. Kostenko M.A., Myakisheva S.N. The Role of Chemotaxis in Morphological Differentiation of Mollusc Neurons. Comp. // Biochem. Physiol., V.115A, № 3, p.265-268. 1996.
25. Koopmans J., Hogen E.I., Copray S. et al. Cryopreservation of porcine fetal ventral mesencephalic tissue for intrastriatal transplantation in Parkinson's disease // Cell Transplant.;10(7):573-81. 2001.
26. Luyet B., Gonzales F. Growth of nerve tis- sue after freezing in liquid nitrogen // Biodynamica. V. 7, p.171-173. 1953.
27. Moscona A.A., Moscona H. The dissocia- tion and aggregation of cells from organ rudiments of the ear ly chick embryo. //J. Anat. Lond., V. 86, p.287. 1952.
28. Negishi T., Ishii Y., Kawamura S. et al. Cryopreservation of brain tissue for primary culture // Exp.Anim., Jul;51(4):383-90. 2002.
29. Pasic M., De sa Faria L.J. Effects and freez- ing on abdominal ganglia of Aplysia // Cryobiology. V. 16, p.390-400. 1979.
30. Pichugin Yu., Fahy G.M., Morin R. Cryopreservation of rat hippocampal slices by vitrification // Cryobiology. V.52, p.228-240. 2006.
31. Silani V., Pizzuti A., Strada O. et al. Human neuronal cell viability demon- strated in culture after cryopreservation // Brain Res. V. 473, № 1, p.169-174. 1988.
32. Spafford J.D., Munno D.W., Nierop P. et al. Calcium Channel Structural Determinants of Synaptic Transmission between Identified Invertebrate Neurons. // J. Biol. Chem., Feb. 7, Vol. 278, Issue 6, 4258-4267. 2003.
33. Spencer G.E., Lukowiak K., Syed N. I. Transmitter-receptor interactions between growth cones of identified Lymnaea neurons determine target cell selection in vitro // J. of Neurosc., Nov.1, 20(21):8077-8086. 2000.
34. Syed N., Richardson P., Bulloch A. Ciliary neurotrophic factor, unlike nerve growth fac- tor, supports neurite outgrowth but synapse formation by adult Lymnaea neurons //J.Neurobiol., V. 29, № 3, p.293-303. 1996.
35. Wildering W. C., Hermann P. M., Bulloch A.G.M. Lymnaea Epidermal Growth Factor Promotes Axonal Regeneration in CNS Organ Culture // J. of Neurosc., Dec. 1, 21(23):9345-9354. 2001.
Review
For citations:
, . Journal Biomed. 2007;1(1):89-96.
Email this article 
